適用范圍:貼壁細(xì)胞和懸浮細(xì)胞(哺乳動(dòng)物細(xì)胞系)的轉(zhuǎn)染。
質(zhì)粒DNA的轉(zhuǎn)染 (每次轉(zhuǎn)染一定要進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn),來(lái)摸索最佳條件,?尤其是轉(zhuǎn)染試劑的最佳用量!)
貼壁細(xì)胞: 轉(zhuǎn)染前一天,用500 μl不含抗生素的培養(yǎng)基接種0.5~2×105細(xì)胞,使之第二天能達(dá)到70-90%匯合。
懸浮細(xì)胞:在準(zhǔn)備DNA-Lip2K復(fù)合物之前,用500 μl不含抗生素的培養(yǎng)基接種4~8×105細(xì)胞即可。
2.?對(duì)每個(gè)轉(zhuǎn)染樣品,進(jìn)行以下操作
a.?在eppendorf管里分別加入50 μl Opti-MEM I ReLipced Serum Medium和0.8 μg DNA輕柔混勻,制成DNA稀釋液。
c.?將DNA稀釋液和Lipo2K稀釋液混合,輕柔混勻,室溫靜置20分鐘, 形成DNA-Lipo2K復(fù)合物。DNA-Lipo2K復(fù)合物在室溫下可穩(wěn)定存在6小時(shí)。
3.?將DNA-Lipo2K復(fù)合物加入到接種好的細(xì)胞中,將培養(yǎng)板輕輕地前后搖動(dòng),使復(fù)合物分散均勻。
4.?在37℃ CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4-6小時(shí)后更換培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)18~48小時(shí)。
不同細(xì)胞培養(yǎng)板中轉(zhuǎn)染時(shí)培養(yǎng)基、核酸及Lipo2K用量
常見(jiàn)細(xì)胞的轉(zhuǎn)染效率(富百科熒光顯微鏡自測(cè)數(shù)據(jù),僅供參考,實(shí)驗(yàn)條件不同轉(zhuǎn)染效率會(huì)有較大差別)
轉(zhuǎn)染效率的測(cè)定方法:?1)實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè); ?2)Western Blot檢測(cè); ?3)流式細(xì)胞術(shù)??4)熒光顯微鏡:?轉(zhuǎn)染含有熒光蛋白基因質(zhì)粒DNA,通過(guò)熒光顯微鏡觀察熒光的強(qiáng)弱以及熒光的效率。
4)???????質(zhì)粒的大小,質(zhì)量和用量對(duì)轉(zhuǎn)染效率很關(guān)鍵。
5)???????轉(zhuǎn)染時(shí)注意脂質(zhì)體和用量,過(guò)量的話對(duì)細(xì)胞毒性大也容易失敗。
6)???????轉(zhuǎn)染作用6小時(shí)一定記得要換含血清的培養(yǎng)基
7)???????培養(yǎng)基以及洗滌細(xì)胞和稀釋用的培養(yǎng)基要無(wú)血清、無(wú)雙抗。
8)???????轉(zhuǎn)染試劑對(duì)個(gè)別細(xì)胞可能有一定毒性,在轉(zhuǎn)染過(guò)程由于提高細(xì)胞的通透性因而不能在培養(yǎng)答基中添加抗生素。
14)?????建議設(shè)置陽(yáng)性對(duì)照和陰性對(duì)照。
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